Роль апоптоза в развитии инсульта

Роль апоптоза в развитии инсульта thumbnail

Классификация
наруш мозгов кровообращ:

1.Острые:

  1. переходящве
    нар мозг кров:

-Транзиторные
ишемические атаки ТИА

-гипертонические
церебральные кризы.

острые
гипертонические энцефалопатии

в) Инсульты:

-ишемические:
*атеротромботические*кардиотромботические
*гемодинамические *гемореологические
*локунарные *по типу дессекции *криптогенные

-гемморрагические:
*субарахноидальные *паренхиматозные
*вентрикулярные *сочетанные

2. Хронические

Хронич ишемия
мозга-дисциркуляторная энцефалопатия.

Причины:

  1. АГ

  2. Атеросклероз

  3. Заболев
    сердца-наруш серд ритма, инфаркты,
    пороки

  4. Аномалии
    строения сосудов-извитость, сужение,
    гиперплазия

  5. Заболевания
    крови- анемии, лейкозы

  6. Опухоли,
    метостазы

  7. Интоксикации-эндогенные,экзогенные

  8. Шейный
    остеохондроз

  9. Мигрень

  10. АТ
    к собственным фосфолипидам

  11. Коагулопатии

  12. Заболеван
    соединит ткани

  13. Сах
    диабет

Факторы
риска:

  1. АГ

  2. Атеросклероз

  3. Фибрилляция
    предсердий

  4. ИБС-инфаркты

  5. Сах
    диабет

  6. Курение

  7. Интоксикации

  8. Гипергликимия

  9. Ожирение

  10. Гиперхолистеринемия

  11. Прием
    оральных контрацептивов

  12. Пол

  13. Возраст
    старше 45

  14. С юга на
    север с запада на восток

Глутамат-кальциевый
каскад
:

В основе формирования
очагового некроза на
фоне ишемии мозга лежат быстрые реакции
глутамат-кальциевого каскада,
разворачивающиеся в первые минуты и
часы после сосудистого инцидента и
являющиеся основным содержанием периода
” терапевтического
окна В развитии
глутамат-кальциевого каскада выделяют
три основных
этапа: индукции (запуск),амплификации (усиление
повреждающего потенциала)
и экспрессии (конечные
реакции каскада, непосредственно
приводящие к гибели клетки)

Этапы:

  1. Анаэробный
    гликолиз+лактолиз

  2. Глутаматная
    экситоксичность- активация глутомата
    и аспартата-возбуждение аминокис с
    поврежд эффектом

  3. Повыш
    прониц ионных каналов: 1)Na,Ca,
    H2O-внутри
    клетки=цитотоксич отек,2) K-вне
    клетки=деполяризац мембран-не будут
    работать ионные каналы

  4. Оксидантный
    стресс-накопление свободных
    радикалов=агрессия NO
    и OH
    и продук полурасп арахаид к-ты

  5. Воспаление
    наруш прониц ГЭБ

  6. Отёк

  7. Экспрессия
    генов индукторов апоптоза

Инфаркт:

  1. Ядерная
    зона- погиб ч-з 5-10 мин за счет некроза

  2. Зона
    ишемической полутени живет 2-6 ч (этапы
    каскада и погиб в результ апоптоза

2.Факторы риска нарушений мозгового кровообращения. Пнмк: определение, классификация, клиника в каротидной и вертебробазилярной системах. Леч диагн. Профилактика

Факторы
риска:

  1. АГ

  2. Атеросклероз

  3. Фибрилляция
    предсердий

  4. ИБС-инфаркты

  5. Сах диабет

  6. Курение

  7. Интоксикации

  8. Гипергликимия

  9. Ожирение

  10. Гиперхолистеринемия

  11. Прием
    оральных контрацептивов

  12. Пол

  13. Возраст
    старше 45

С
юга на север с запада на восток

ПНМК-
острые нарушения мозг
кровообр, котор проявл очаговыми и/или
общемозговыми симптомами, длительн не
более 24 часов.(ТИА и гиперт кризы)

ТИА-
очагов симпт зависит от повр бассейна,
общемозг сим нерезко выр.

Каротидный
б

  1. Наруш
    чувствит-онемен рук, пол лица
    гемигипостезии

  2. Двигат
    расстройства-централ моно или
    гемипарезы

  3. Сенсорные
    или моторные джексоновские припадки

  4. Афазия(моторная,
    сенсорная)

  5. Оптикопирам сим:слепота
    на один глаз

Вертебробазил
б

  1. Умер
    затыл боль, головокр,шаткость,тошн,рвота

  2. Зрительные
    нар: слепота, гемианопсии, скатомы,
    фатомы+глазодвиг расстрой:двоение

  3. Легкий бульбарный
    синдром+сниж памяти, шум в ушах, вращ
    предметов.

Передняя
мозг арт

Лобная(внутр,нар,орбитал
пов), теменная доли, мозол тело, передн
отделы внутр капс.

Задняя
мозгов

Затыл д, ниж отд
височн доли, зрит бугор, задние отд
внутр капс.

Средняя
мозг

Лобная, теменная,
височные доли, внутр капс

Позвоночная
а

Мозжечек, ствол,
верхн шейн сегменты.

Гипертонич
церебрал криз

На
фоне АД появл общемозговой симптоматики,
очаговая симптоматика отсутств или
слабо выр: голов боль, тошн, рвота, заторм,
дизориентиров+вегитатив симпт-потливость,
озноб, гиперем лица, тремор пальцев рук,
эпиприп.(очаг-центр парез лицеев нерва)

Диагностика

  1. общий
    клинич миним: липидограмма, холестерин,
    сахар..

  2. кт

  3. мрт-нет
    патол в посл возм кисты

  4. узд
    доплерография, -бляшки,извитости,утолщен.

Лечение

  1. антигипотенз
    ср-ва: ингибиторы апф, блокатторы
    кальциев каналов

  2. статины-симвастатин,
    аторвастатин

  3. антиагреганты
    –ачпирин, кардиомагнил

  4. антикоагулянты-когда
    есть очагов симптом при тиа.

профилактика
повторения:

 –
при улучшении общего самочувствия
приступайте к восстановительным
мероприятиям;
 –
возвращайтесь к активной жизни, и
профессиональной деятельности;
 –
откажитесь от курения, так как оно
увеличивает риск появления инсульта в
два-четыре раза.

исключите алкогольные напитки –
употребление алкоголя провоцирует
увеличение артериального давления и
повышение угрозы кровоизлияния в мозг;

стабилизируйте массу тела, нормализовав
режим питания;

каждый день делайте легкие физические
упражнения;

контролируйте уровень артериального
давления. 

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]

  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #
  • #

Источник

  1. Журналы
  2. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски
  3. # 9, 2018
    (ИНСУЛЬТ)

  4. Динамика маркеров апоптоза в остром п…

Авторы:

  • Т. П. Клюшник
    ФГБНУ «Научный центр психического здоровья», Москва, Россия
  • И. Н. Отман
    ФГБНУ «Научный центр психического здоровья», Москва, Россия
  • А. С. Чуканова
    ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия
  • Г. Г. Надарейшвили
    ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия
  • М. Ш. Гулиева
    ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия
  • Е. И. Гусев
    ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия

Журнал:
Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2018;118(9): 26-31

Просмотрено:
1446

Скачано:
1192

В последние десятилетия острая фокальная ишемия головного мозга, в частности ишемический инсульт (ИИ), является серьезной и актуальной проблемой, что связано с высокими показателями заболеваемости, смертности и инвалидизации. Результаты активного изучения биохимических и морфологический изменений ишемического повреждения головного мозга предоставляют возможности для более широкого понимания патогенеза острой фокальной ишемии головного мозга и создания новых эффективных подходов к еe лечению.

Каскад ишемических реакций — сложный комплекс процессов, который включает в себя: клеточную биоэнергетическую недостаточность, глутаматную эксайтотоксичность, окислительный стресс, дисфункцию гематоэнцефалического барьера, микрососудистые повреждения, гемостатическую активацию, постишемическую аутоиммунную реакцию, патологический апоптоз, гибель нейронов, глиальных и эндотелиальных клеток [1]. В процессе биохимических реакций одно событие тесно связано с другими компонентами ишемического каскада. Часть из них развивается в течение нескольких часов, другие активируются через несколько суток после развития ишемии и длятся в течение всей последующей жизни, несмотря на восстановление циркуляции крови [2]. При этом они индуцируют и поддерживают другие отдаленные последствия ишемии: реакцию генома с включением молекулярных программ, изменения астро- и микроглиального клеточного пула и связанные с ним иммунные сдвиги, локальное воспаление в очаге ишемии, нарушение целостности гематоэнцефалического барьера [3]. Одну из ключевых ролей в процессе развития оксидантного стресса играет дисфункция митохондрий, которая заключается в том, что митохондриальная ДНК подвергается повреждению, опосредованному активными формами кислорода (АФК), что в итоге приводит к митохондриальной геномной нестабильности и нарушению функции внешнего дыхания [4—6]. Все вышеописанные процессы тем или иным образом приводят к гибели клеток путем некроза, ярко представленного в зоне ишемического ядра.

В зоне пенумбры преобладает апоптотический механизм гибели клеток. Именно в этой зоне ишемическое повреждение недостаточно тяжелое для развития некроза клеток [7, 8], но достаточное для запуска их преждевременной запрограммированной смерти [3, 4]. Выделяют несколько факторов, определяющих, какой из механизмов гибели (некроз или апоптоз) будет преобладать: степень и длительность локальной ишемии, степень зрелости клеток, концентрация внутриклеточного свободного Са2+ и клеточное микроокружение [9—10].

Раннее проведение терапевтических мероприятий имеет решающее значение для спасения потенциально жизнеспособной ткани в зоне пенумбры и улучшения исхода заболевания. Именно на эту зону ориентированы все современные методы лечения, поэтому понимание механизмов и регулирующих факторов данного процесса является наиболее актуальным направлением клинико-биохимических исследований [11].

Апоптоз представляет собой активный и контролируемый процесс повреждения клеток, регулируемый не только биохимически, но и гененетически. При апоптозе, в отличие от некроза, отмечается активация специфических биологических механизмов, в результате которых происходит разрыв молекулы ДНК и разрушение белоксинтезирующих структур с сохранением целостности мембраны клетки до завершения апоптотических клеточных реакций. Апоптотический процесс характеризуется повышением внутриклеточного содержания Са2, образованием АФК, снижением трансмембранного потенциала митохондрий, выделением цитохрома С из митохондрий в цитоплазму, активацией каспаз и нелизосомных эндогенных эндонуклеаз с последующим расщеплением ядерной ДНК, рибосомальной РНК и белков на фрагменты. Важной чертой апоптоза является то, что удаление поврежденных клеток происходит без развития реакций воспаления [12, 13].

Механизмы запрограммированной смерти включаются позже некротического каскада (спустя 1—2 ч после развития ишемии), достигают максимальной активности на 2—3-и сутки и запускаются при любых ишемических и травматических повреждениях нервной ткани. Апоптоз наряду с другими отдаленными процессами повреждения обусловливает увеличение объема повреждения ткани [1].

В процессе апоптоза участвуют два механизма: внутренний путь, обусловленный митохондриальной недостаточностью, и внешний, возникающий при активации поверхностных рецепторов смерти клетки [14]. Запуск апоптоза происходит при распознавании Fas-рецептором экспрессируемого на нейронах и глии после ишемии своего лиганда (CD95L), что приводит к взаимодействию его внутриклеточного домена с адапторным белком FADD с образованием комплекса DISC (Death-Inducing Signalling Complex) [15]. Затем происходит связывание этого комплекса с молекулой прокаспазы-8, что в дальнейшем, в зависимости от типа клетки, имеет два пути развития событий. В первом случае каспаза-8 напрямую активирует прокаспазу-3 с образованием белков, инициирующих апоптоз [16]. Во втором случае активация прокаспазы-3 имеет более длинный путь, начинающийся с процесса расщепления белка Bid, активирующего проапоптотические белки Bax и Bak, которые изменяют проницаемость наружной мембраны митохондрий, и приводящий к выходу цитохрома С из внутренней мембраны митохондрий [15]. В результате образуется апоптотический сигнальный комплекс, включающий в себя цитохром С, возбуждающий фактор апоптозной протеазы-1 (Apaf-1) и дезокси-АТФ, что инициирует образование каспазы-9 и приводит к активации прокаспазы-3. И уже под ее влиянием происходит дальнейшая гибель клетки, сопровождающаяся фрагментацией ДНК и образованием апоптотических телец, быстро фагоцитируемых макрофагами с выделением противовоспалительных цитокинов [17].

Индукция апоптоза при повреждении ДНК обусловлена появлением в клетке нерепарированных повреждений ДНК, приводящих к активации протеинкиназ, которые фосфорилируют и активируют белковый фактор транскрипции p53. Его активация ведет к подавлению транскрипции генов антиапоптотических белков (bcl-2 и др.) и активации р53-зависимой транскрипции генов проапоптотических белков BAX и FAS. Кроме того, р53 ингибирует синтез ДНК, блокируя инициацию репликации [18]. В последние годы белок р53 рассматривается как один из основных проапоптотических факторов, участвующих в индукции программированной смерти клетки.

На дальнейшее развитие запущенной программированной смерти клетки влияют регуляторы апоптоза семейств Вcl-2 и IAP. Белки семейства Вcl-2 включают как Вcl-2-подобные факторы выживания, так и BAX-подобные факторы гибели [19—21]. Было выявлено [22], что семейство Bcl-2 является регулятором митохондриального пути запуска апоптоза и играет ключевую роль в механизме клеточной гибели при церебральной ишемии. Кроме того, избыток антиапоптотических белков семейства Bcl-2 защищает ткань мозга от ишемии. Белок Bcl-2 контролирует передачу апоптозного внутриклеточного сигнала за счет предотвращения оттока цитохрома C из митохондрий через митохондриальные поры переходной проницаемости, что предотвращает образование апоптосомы с использованием цитохрома C за счет связывания каспазы 9 и апоптозного протеазоактивирующего фактора-1 [23].

На экспериментальных моделях было показано [24], что выраженность повреждения ткани головного мозга определяется не только степенью и длительностью локальной ишемии, но и соотношением проапоптотических и антиапоптотических процессов, которое и обусловливает особенности течения и исхода ИИ.

Цель исследования — изучение динамики концентрации маркеров апоптоза Bcl-2 и p53 в сыворотке крови пациентов в остром периоде ИИ в сопоставлении с динамикой тяжести неврологического дефицита и объемом поражения головного мозга.

Материал и методы

В соответствии с целями исследования обследовали 51 пациента (34 мужчины и 17 женщин) в возрасте от 45 до 75 лет (средний возраст 60,5±2,2 года) в остром периоде верифицированного МРТ впервые развившегося ИИ в системе внутренней сонной артерии: у 27 (52,9%) больных — атеротромботический подтип, у 24 (47,1%) — кардиоэмболический. Больные были включены в исследование в первые 24 ч от начала заболевания и составили основную группу. В группу сравнения вошли 20 больных (12 мужчин и 8 женщин) в возрасте от 45 до 75 лет (средний возраст 58,7±2,1 года) с хронической ишемией головного мозга, по данным анамнеза и результатам МРТ не переносивших инсульт.

Критерии включения: информированное согласие на участие в исследовании; возраст от 45 до 75 лет; верифицированный впервые выявленный ИИ в системе внутренней сонной артерии (атеротромботический и кардиоэмболический ИИ по критериям ТОАSТ); менее 24 ч от начала развития заболевания; неврологическая симптоматика менее 14 баллов по шкале тяжести инсульта NIHSS.

Критерии невключения: отказ от подписания информированного согласия; возраст менее 45 или более 75 лет; повторный инсульт; геморрагический инсульт либо спонтанное субарахноидальное кровоизлияние; ИИ в вертебрально-базилярной системе; расстройства сознания при поступлении до уровня сопора или комы; плохо контролируемая артериальная гипертензия с АД >200/100 мм рт.ст.; острый инфаркт миокарда; наличие застойной сердечной недостаточности ФК II; повышение уровня печеночных трансаминаз (аланинаминотрансфераза и аспартатаминотрансфераза) более чем в 1,5 раза; содержание креатинина в сыворотке крови более 132,6 мкмоль/л; наличие онкологических заболеваний; наличие наследственно-дегенеративных, системных, аутоиммунных, инфекционных и эндокринных заболеваний; декомпенсация сопутствующей соматической патологии; противопоказания для проведения КТ и МРТ головного мозга; участие в других клинических исследованиях.

Проводились динамическое клинико-неврологическое обследование с оценкой выраженности неврологического дефицита по шкале NIHSS; КТ и МРТ головного мозга; иммуноферментный анализ ELISA для определения уровней проапоптотических (p53) и антиапоптотических факторов (Bcl-2) в динамике в сыворотке крови; клинико-инструментальные исследования патологии сердца и сосудов и биохимических показателей крови для определения соответствия пациентов критериям включения. Обследование проводили в 1, 3, 5 и 10-е сутки ИИ.

Статистическая обработка и анализ материала включали применение параметрических и непараметрических методов: вычисление средних значений и доверительных интервалов, анализ корреляционных зависимостей показателей с использованием коэффициента корреляции Пирсона, критерия Стьюдента для выявления статистически значимых различий средних значений параметров в различных выборках. В проведенных сравнениях различие между показателями признавалось статистически значимым на 5% уровне.

Результаты и обсуждение

При анализе динамики неврологического статуса пациентов основной группы по результатам оценки по шкале NIHSS выявлено, что неврологический дефицит в 1-е сутки ИИ варьировал от 5 до 14 баллов (в среднем 11,7±1,5 балла). За время наблюдения (10 сут) у всех пациентов регрессировал общемозговой синдром, у большинства пациентов было отмечено уменьшение неврологического дефицита до 8,3±3,2 балла, за исключением 2 пациентов, у которых состояние осталось неизменным.

Объем повреждения вещества головного мозга варьировал от 15 до 350 см3 (в среднем 117,5±9,6 см3). У мужчин средний объем повреждения вещества мозга составил 106,0±9,2 см3, у женщин — 129,7±10,1 см3.

В проведенном исследовании при анализе про- и антиапоптотических белков в сыворотке крови у пациентов в остром периоде ИИ были зафиксированы статистически достоверно высокие уровни белков р53 и Bcl-2 на 3-и (19,03±13,94 Ед/мл и 3,12±3 нг/мл соответственно) и 10-е сутки (15,91±11,76 Ед/мл и 3,76±4 нг/мл соответственно) исследования при сопоставлении с группой сравнения согласно двухвыборочному t-тесту Стьюдента (р<0,05). Результаты динамики сывороточных уровней р53 представлены на рис. 1.

Роль апоптоза в развитии инсультаРис. 1. Динамика содержания белка р53 в сыворотке крови в 1-е, 3-и, 5-е и 10-е сутки ИИ (Ед/мл). * — достоверные отличия по сравнению с группой сравнения (р<0,05); двухвыборочный t-тест Стьюдента.

В норме у здоровых в сыворотке крови проапоптотический белок р53 не определяется. В настоящем исследовании в группе сравнения среднее значение р53 составило 1,9±0,3 Ед/мл.

При анализе различий уровня в сыворотке р53 в зависимости от тяжести неврологического дефицита в 1-е сутки ИИ, оценивавшегося по шкале NIHSS (сравнение подгрупп, полученных при делении основной группы исследования по балльной оценке: NIHSS ≥10 и NIHSS <10 баллов), были зафиксированы достоверно более высокие значения данного показателя у пациентов в подгруппе с более выраженным неврологическим дефицитом в 1-е сутки (19,82 Ед/мл; р=0,0384) и 3-и сутки (26,94 Ед/мл; р=0,0245) ИИ (рис. 2).

Роль апоптоза в развитии инсультаРис. 2. Динамика содержания в сыворотке крови белка р53 у больных с различной выраженностью неврологического дефицита (Ед/мл). * — достоверные отличия в группах (р<0,05) при использовании двухвыборочного t-теста Стьюдента.

При анализе средних уровней р53 в сыворотке крови в зависимости от объема очага повреждения мозга по данным МРТ (сравнение подгрупп, полученных при делении основной группы исследования, с объемом поражения 50 см3 и более и менее 50 см3) были установлены более высокие значения концентрации белка р53 на протяжении всего исследования: 1-е сутки заболевания — 17,97±13,55 и 0,38±0,25 Ед/мл (р=0,0009); 3-и сутки — 28,75±20,56 и 1,2±0,89 Ед/мл (р=0,008); 5-е сутки — 14,78±14,36 и 1,29±0,82 Ед/мл (р=0,04) и 10-е сутки — 20,645±14,97 и 0,5±0,37 Ед/мл соответственно (р=0,007) (рис. 3).

Роль апоптоза в развитии инсультаРис. 3. Динамика содержания белка р53 в сыворотке крови в зависимости от объема поражения мозга (Ед/мл). * — достоверные отличия в группах (р<0,05) при использовании двухвыборочного t-теста Стьюдента.

В основной группе средние сывороточные значения ингибирующего апоптоз белка Bcl-2, согласно двухвыборочному t-тесту Стьюдента, были достоверно выше таковых в группе сравнения (р<0,05) на 3-и (3,12±3 нг/мл) и 10-е сутки (3,76±4 нг/мл) ИИ. У всех пациентов группы сравнения Bcl-2 в сыворотке крови не определялся (рис. 4).

Роль апоптоза в развитии инсультаРис. 4. Динамика содержания белка Bcl-2 в сыворотке крови в 1-е, 3-и, 5-е и 10-е сутки ИИ (нг/мл). * — достоверные отличия при сопоставлении с группой сравнения с использованием двухвыборочного t-теста Стьюдента (р<0,05).

Содержание белка Bcl-2 в сыворотке крови в подгруппе больных с объемом повреждения более 50 см3 было достоверно выше только на 10-е сутки (5,065± 5,0 нг/мл; р=0,0445), что, возможно, обусловлено временными затратами для активации компенсаторных антиапоптотических процессов (рис. 5).

Роль апоптоза в развитии инсультаРис. 5. Динамика содержания белка Bcl-2 в сыворотке крови в зависимости от объема поражения мозга (нг/мл). * — достоверные отличия при сопоставлении с группой сравнения с использованием двухвыборочного t-теста Стьюдента (р<0,05).

Таким образом, в настоящем исследовании у пациентов с ИИ были выявлены достоверно высокие уровни апоптозиндуцирующего белка р53 и апоптозингибирующего белка Bcl-2 на 3-и и 10-е сутки заболевания при сопоставлении с группой сравнения. Повышение содержания белка р53 положительно коррелировало с тяжестью неврологического дефицита уже в 1-е и 3-и сутки острого ИИ и, по данным МРТ, с объемом поражения паренхимы мозга с момента ИИ и на протяжении всего исследования. Высокий уровень белка Bcl-2 положительно коррелировал с большим объемом очага поражения на 10-е сутки ИИ, что, возможно, обусловлено временны́ми затратами для активизации компенсаторного антиапоптотического процесса.

Полученные данные подтверждают активное участие про- и атиапоптотических процессов в формировании отсроченной гибели нейронов головного мозга, которые являются важными компонентами повреждения ткани мозга при И.И. Идентификация морфологических и биохимических маркеров апоптоза должна в перспективе способствовать более глубокому пониманию механизмов патогенеза заболевания, улучшению дифференциальной диагностики, созданию принципиально новых направлений терапии и возможности прогнозирования течения ИИ (при использовании комбинации маркеров с оценкой каждого из звеньев патогенеза, помимо апоптотических маркеров) [12].

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

*e-mail: chukanova.anna@gmail.com

Список литературы:

  1. Гусев Е.И., Скворцова Е.И. Ишемия головного мозга. М.: Медицина; 2001.
  2. Hossmann KA. Viability thresholds and the penumbra of focal ischemia. Ann Neurol. 1994;36:557-565.
  3. Obrenovitch TP. The ischaemic penumbra: twenty years on. Cerebrovasc Brain Metab Rev. 1995;7:297-323.
  4. Lipton P. Ischemic cell death in brain neurons. Physiol Rev. 1999;79:1431-1568.
  5. Boveris A, Chance B. The mitochondrial generation of hydrogen peroxide. General properties and effect of hyperbaric oxygen. Biochem J. 1973;134:707-716.
  6. Dalkara T, Moskowitz MA. The complex role of nitric oxide in the pathophysiology of focal cerebral ischemia. Brain Pathol. 1994;4:49-57.
  7. Лушников Е.Ф., Загребин В.М. Архив патологии. 1987;84-89.
  8. Waters C. RBI Neurotransmissions, Newsletter for Neuroscientist 1997; 13(2):27.
  9. Lee JM, Zipfel GJ, Choi DW. The changing landscape of ischaemic brain injury mechanisms. Nature. 1999;399:7-14.
  10. Leist M, Nicotera P. Calcium and neuronal death. Rev Physiol Biochem Pharmacol. 1998;132:79-125.
  11. Matthew RB, White P, Cowley P, Werring DJ. Revolution in acute ischaemic stroke care: a practical guide to mechanical thrombectomy. Pract Neurol. 2017;17(4):252-265. https://doi.org/10.1136/practneurol-2017-001685
  12. Фомченко Н.Е., Воропаев Е.В. Биологические аспекты апоптоза (обзор литературы). Проблемы здоровья и экологии. 2013;2:39-45.
  13. Гомазков О.А. Нейрохимия ишемических и возрастных патологий мозга. Информационно-аналитическое издание. М. 2003.
  14. Broughton BR, Reutens DC, Sobey CG. Apoptotic mechanisms after cerebral ischemia. Stroke. 2009;40(5):331-339. https://doi.org/10.1161/STROKEAHA.108.531632
  15. Strasser A, Jost PJ, Nagata S. The many roles of FAS receptor signaling in the immune system. Immunity. 2009;30:180-192.
  16. Orrenius S, Gogvadze V, Zhivotovsky B. Calcium and mitochondria in the regulation of cell death. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2015;460:72-81.
  17. Gillies LA, Kuwana T. Apoptosis regulation at the mitochondrial outer membrane. J Cell Biochem. 2014;115:632-640.
  18. Oda E, Ohki R, Murasawa H. Noxa, a BH3-only member of the Bcl-2 family and candidate mediator of p53-induced apoptosis. Science. 2000;288:1053-1058.
  19. Nakano K, Vousden KH. PUMA, a novel proapoptotic gene, is induced by p53. Mol Cell. 2001;7:683-694.
  20. Festjens N, Gurp M, Loo G. Bcl-2 family members as sentineles of cellular integrity and role of mitichondrial intermembrane space proteins in apoptotic cell death. Acta Haematol. 2004;111:7-27.
  21. Deng X, Gao F, Flagg T, Anderson J, May WS. Bcl-2’s flexible loop domain regulates p53 binding and survival. Mol Cell Biol. 2006;26:4421-4434.
  22. Ouyang Y, Giffard G. MicroRNAs affect BCL-2 family proteins in the setting of cerebral ischemia. Neurochem Int. 2014;4:2-8. https://doi.org/10.1016/j.neuint.2013.12.006
  23. Kim R. Unknotting the roles of Bcl-2 and Bcl-xL in cell death. Biochem Biophys Res Commun. 2005;333:336-343.
  24. Чуканова Е.И., Чуканова А.С. Отдельные механизмы патогенеза формирования недостаточности мозгового кровообращения. Фарматека (Кардиология/Неврология). 2014;13(286):14-20.

Источник

Читайте также:  Как вылечиться от инсульта в домашних народными средствами